AGAR LICZNIK PŁYTKI WODNEJ (ISO)
KOD: CM1012
Pożywka do wyliczania hodowanych mikroorganizmów z wody przy użyciu techniki liczenia kolonii.
Typowa formuła * gm / litr
Tryptone 6.0
Ekstrakt drożdżowy 3.0
Agar 15,0
pH 7,2 ± 0,2 w 25 ° C
* Dostosowane zgodnie z wymaganiami w celu spełnienia standardów wydajności
Kierunki
Zawiesić 24 g agaru z liczbą płytek na wodzie (ISO) w 1 litrze wody destylowanej i delikatnie doprowadzić do wrzenia, aby się rozpuściło. W razie potrzeby rozprowadź objętości od 15 ml do 20 ml w probówkach, butelkach lub innych pojemnikach. Sterylizuj w autoklawie w 121 ° C przez 15 minut. Po sterylizacji pozostawić do ostygnięcia i utrzymywać w temperaturze 45 ± 1 ° C za pomocą łaźni wodnej.
Opis
Pożywne, nieselektywne podłoże dla wszystkich organizmów hodowlanych w wodzie, które jest zgodne z ISO 6222: 1999 (E) Jakość wody - Oznaczanie mikroorganizmów hodowlanych - Liczba kolonii przez zaszczepienie w pożywce agarowej.
Wody wszelkiego rodzaju niezmiennie zawierają różnorodne mikroorganizmy pochodzące z różnych źródeł, takich jak gleba i roślinność. Oszacowanie ogólnych liczb dostarcza użytecznych informacji do oceny i nadzoru jakości wody. Oddzielne zliczenia są zwykle wykonywane z mikroorganizmów, które są zdolne do wzrostu i tworzenia kolonii na pożywkach agarowych w temperaturze 36 ° C i 22 ° C.
Liczby kolonii są przydatne do oceny integralności źródeł wód gruntowych i wydajności procesów uzdatniania wody, takich jak koagulacja, filtracja i dezynfekcja, i zapewniają wskazanie czystości i integralności systemu dystrybucji. Można je również wykorzystać do oceny przydatności źródła wody do przygotowywania żywności i napojów, aby uniknąć zanieczyszczenia produktu organizmami psuącymi się.
Główna wartość liczby kolonii polega na wykrywaniu zmian w stosunku do oczekiwanej liczby na podstawie częstego, długoterminowego monitorowania. Każdy nagły wzrost liczby może być wczesnym ostrzeżeniem o poważnym zanieczyszczeniu i wezwaniem do natychmiastowego zbadania1.
Technika
Przygotuj próbkę zgodnie z obowiązującymi procedurami i w razie potrzeby rozcieńczyć. Umieścić objętość badanej próbki (lub jej rozcieńczenia), nieprzekraczającą 2 ml, na szalce Petriego. Dodaj 15 ml do 20 ml agaru z licznikiem stopionej wody (ISO) i ostrożnie wymieszaj, delikatnie obracając. Pozwól medium się ustawić.
Czas między dodaniem próbki badanej (lub jej rozcieńczeniem) a dodaniem stopionego medium nie może przekraczać 15 minut. Zaszczepić co najmniej jedną płytkę do inkubacji w każdej temperaturze.
Odwrócić płytki i inkubować jeden zestaw w temperaturze 36 ° C ± 2 ° C przez 44 ± 4 godziny. Inkubuj drugi zestaw w temperaturze 22 ° C ± 2 ° C przez 68 ± 4 godziny. Zbadaj płytki natychmiast po inkubacji. Jeśli nie jest to możliwe, należy schłodzić płytki i zbadać je w ciągu 48 godzin. Odrzuć każdą płytkę z konfluentnym wzrostem.
Dla każdej temperatury inkubacji policz kolonie obecne na każdej płytce i oblicz szacunkową liczbę jednostek tworzących kolonie (cfu) obecnych w 1 ml próbki.
Wyrazić wyniki jako liczbę jednostek tworzących kolonię na mililitr (cfu / ml) próbki dla każdej temperatury inkubacji.
Warunki przechowywania i okres ważności
Przechowywać odwodnione podłoże w temperaturze 10–30 ° C i użyć przed datą ważności na etykiecie.
Przygotowane płytki z medium przechowuj w temperaturze 2–8 ° C.
Wygląd
Medium odwodnione: słomy, sypki proszek
Przygotowane medium: żel w kolorze słomy